Western blot parcialmente desnaturalizante de Transtirretina
en plasmas de portadores de la mutación V30M
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Introducción
Figura 1.
La polineuropatía amiloidótica familiar (FAP) es una en-
fermedad autosómica dominante caracterizada por el depó-
sito de material fibrilar formado por moléculas de TTR (TTR,
14 Kd, transportador plasmático de tiroxina y retinol), que
se acumulan en el espacio intersticial de nervios periféri-
cos y tejido muscular cardíaco. Mutaciones de sustitución
en la secuencia de TTR interfieren con su capacidad para
asociarse en tetrámeros estables, dando por resultado un
exceso relativo de monómeros libres, disponibles para la
formación de depósitos amiloideos y el subsiguiente daño
tisular (2,3,4). La más común, entre cientos de mutaciones
puntuales ya descriptas, es la que codifica para la sustitu-
ción Val30Met en el extremo N terminal de la secuencia TTR
(5,6).
Entre las principales contribuciones del laboratorio clí-
nico al diagnóstico de la enfermedad amiloidótica se des-
tacan la inmunohistoquímica (IHC) y la espectroscopía de
masas (MS), en la identificación de TTR en biopsias; así
como también la secuenciación del ADN genómico en san-
gre periférica para detectar posibles portadores mutantes
ꢀ
A) Secuencia completa de TTR (ácidos 1 a 127) expresada en célu-
las BL21DE3. Se destacan en azul y rojo las secuencias de aminoá-
cidos correspondientes a las proteínas recombinantes F127 y F74,
respectivamente. B) Perfil de tinción con Ponceau Red de proteínas
recombinantes, F127 y F74 que expresan la secuencia completa y
(7,8,9,10,11). El Western blot desnaturalizante (SDS-PAGE
seguido de inmunoblot) (12) también ha demostrado ser
una herramienta analítica útil para detectar e identificar la
TTR monomérica en plasma y material amiloideo (13,14).
Sin embargo, esta técnica es inadecuada para diferenciar
moléculas de TTR mutantes de las formas no mutadas, ya
que en general no muestran diferencias en su comporta-
miento migratorio ni inmunológico. Por lo tanto, se descri-
be aquí una modificación simple en el protocolo de Western
blot, con potencial para identificar plasmas de portadores
de la mutaciónV30M y eventualmente otras también deses-
tabilizantes de la estructura multimérica de TTR.
71 aminoácidos C terminales de TTR (calles 2 y 3, respectivamente)
y transferidos a nitrocelulosa después del análisis en 12% PAGE-SDS
y antes de la incubación con anticuerpos apropiados. Las bandas
de marcador en la calle 1 corresponden a pesos moleculares de 17,
25, 35, 40, 55,70, 100 y 130 Kd, respectivamente. C) Reactividad
de F127 y F74 con anticuerpos comerciales. Se mezclaron alícuotas
equivalentes de lisados de bacterias que expresan independien-
temente F171 y F74, se procesaron en PAGE / SDS, se transfirieron
y se analizaron contra el suero p71 / 98 (calle 4) y los anticuerpos
monoclonales MAbs #A, #B y #C (ver Mat y Métodos, en calles 5, 6 y
7, respectivamente).
Materiales y métodos
Muestras de plasma: se obtuvieron plasmas de pacien- inicial) se cargaron en mini PAGE-SDS 12% y se transfirieron
tes positivos o negativos para la mutación V30M según la a nitrocelulosa (80mA / 17 V, 12 hs), que se bloqueó con BSA
secuenciación del genoma del exón 2 del gen de la TTR en el al 3% PBS seguido de incubación con anticuerpos primarios
Laboratorio Central del Hospital Italiano de la Ciudad de Bue- conjugados correspondientes, y desarrollo de señal con qui-
nos Aires, a partir de muestras de sangre entera con EDTA, y mioluminiscencia (Pierce-ECL) y registro de datos con GBox
se almacenaron a -20ºC hasta su análisis.
Análisis en SDS-PAGE e inmunotransferencia: el proce- gel más anchos (12 mm en lugar de los 5 mm normales)
(Syngene-Sinoptics). Se usaron eventualmente peines de
-
dimiento general para el análisis SDS-PAGE e inmunoblots para permitir la carga de mayores volúmenes de muestras
en un formato mini Bio-Rad se describió anteriormente de plasma (ver Figura 3A).
(
15). En un experimento típico, 10 µl de plasma de porta- • Clonación y expresión en bacterias BL21-DE3: los frag-
dores V30M e individuos control (negativos para la muta-
ción V30M) se mezclaron independientemente con 10 µl
de buffer muestra 2X Laemmli (Tris 0,05 M pH: 6,5, SDS 6%,
mercaptoetanol al 10%) seguido de la adición de 80 µl de 1X
del mismo tampón. La mezcla de 100 µl se dividió luego en
dos alícuotas idénticas que se calentaron a 95ºC durante
mentos de ADN que codifican para la secuencia de la TTR
completa de 127 aminoácidos o aminoácidos terminales
74-C, se amplificaron mediante la técnica de la cadena de
la polimerasa (PCR, polymerase chain reaction) usando
un ADN sintético (IDT) que contiene la secuencia de co-
dificación TTR (16) como templado. Los fragmentos am-
plificados se clonaron en sitios Bam HI-Hind III del vector
pET30a (Novagen-RifeSciences) y se expresaron como
proteínas recombinantes F127 y F74 en bacterias BL21-
DE3 tras la inducción con IPTG.
10-15 minutos (muestra desnaturalizada, D) o se dejaron
a temperatura ambiente (parcialmente desnaturalizadas,
PD) hasta la carga del gel. Aproximadamente 20-25 µl de la
muestra total (equivalente a 2-3 µl de la muestra de plasma
ByPC 2018;82(2):22-27.