Desarrollo de un sistema de cuantificación de frataxina humana para el diagnóstico complementario
y seguimiento de individuos con Ataxia de Friedreich
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Producción de anticuerpos anti rFxn
La preparación del suero hiperinmune contra rFxn en cone-
Optimización del EIA
Se optimizó un EIA de competencia en fase heterogénea.
jos de la raza Nueva Zelanda, se realizó empleando rFxn pura de Este ensayo consiste en preincubar las muestras o estándares
concentración conocida, en presencia de adyuvante (hidróxido de concentración de Fxn con una dilución conocida de anticuer-
de aluminio 4 % p/v, hidróxido de magnesio 4 % p/v, en PBS). po anti-Fxn. La mezcla así obtenida se incuba luego en una mi-
El título del antisuero se determinó por la técnica de ELISA, tal croplaca cuyos pocillos han sido recubiertos con Fxn, de modo
como se describe en el párrafo siguiente.
que los anticuerpos que no han sido bloqueados en la preincu-
Para producir este suero, los conejos recibieron 6 dosis de bación, quedan pegados a la microplaca. Luego del lavado, los
100 μg de proteína rFxn purificada, en adyuvante completo de anticuerpos unidos se detectan empleando anticuerpos anti-
Freund, a razón de una dosis por semana. Al cabo de ese tiempo conejo unidos a peroxidasa (HRPO), y posterior revelado con
se tomó a los animales una muestra de sangre por punción de solución de sustrato cromógeno (TMB), y detenido con H SO
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la arteria auricular. El suero se separó por centrifugación (10 4N (Figura 1). La optimización general del ensayo se realizó en
minutos a 3.000 rpm) y fue conservado a -20 ºC hasta el mo- una serie de etapas, que se describen a continuación:
mento de su uso. El título de anticuerpos específicos contra el
inmunógeno se determinó por ELISA. Brevemente, se recubrie-
ron los pocillos de una placa de 96 pocillos (Nunc MaxiSorp) con
a) determinar la dilución óptima del anticuerpo de conejo-anti-
rFxn previamente producido, realizando en una curva de calibra-
ción con diferentes diluciones de anticuerpo primario y utilizando
1xEC50, 2xEC50 y 4xEC50 (valores que surgen de la curva de
titulación de anticuerpo primario); a su vez, esta comparación se
realizó empleando micro placas sensibilizadas con 0,1 μg de rFxn
por pocillo, y 1 μg de rFxn por pocillo; la curva de calibración se rea-
lizó desde 0,3 μg/ml en adelante, empleando diluciones 1/2, y la
dilución de anticuerpo conjugado fue en exceso (1 / 5.000);
b) determinar la masa óptima de rFxn inmovilizada en la micro-
placa; utilizando el mismo diseño mencionado en el punto ante-
rior, se evaluó el rendimiento del sistema empleando 0,1 μg de
rFxn por pocillo, y 1 μg de rFxn por pocillo.
0,5 μg/pocillo de rFxn durante 1 hora a 37 ºC, luego se lavó con
PBS-Tween 20 0,05 % v/v y finalmente se procedió al bloqueo
durante 18 hs (O.N.) a 4 ºC con PBS + leche en polvo 3 % p/v. La
placa se lavó de igual modo, y los sueros de conejo se incuba-
ron en diluciones seriadas al cuarto, partiendo desde 1/1.600.
La presencia de anticuerpos específicos se reveló empleando
un anticuerpo conjugado (HRPO) comercial (Bethyl) en dilu-
ción 1/5.000, incubado en la placa durante 1 h a 37 ºC en un vo-
lumen final de 100 μl de diluyente (el mismo que el bloquean-
te). El revelado colorimétrico se realizó empleando un sustrato
cromogénico comercial (TMB, Life Technologies) durante por lo
menos 10 minutos, y deteniendo la reacción por agregado de
c) definir cuál es el mejor buffer de dilución de muestras y están-
dares de concentración; en esta fase del trabajo se comparó el
rendimiento del diluyente formulado a base de PBS-leche en pol-
vo al 3 % (p/v), respecto de PBS-SFB al 10 % (v/v).
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0 μl de H SO 4 N. La lectura de densidad óptica se realizó en
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un lector de microplacas (TECAN Instruments) y el análisis de
las curvas se realizó utilizando el software Graph Pad Prism 6.0.
d) evaluar las condiciones de conservación del anticuerpo prima-
rio; para ello, se comparó el decaimiento de la curva de titulación
de alícuotas congeladas y descongeladas varias veces a lo largo
de un intervalo de tiempo (hasta 5 meses), con el resultado de
mantener una alícuota a 4 ºC en presencia de 50 % de glicerol y
azida sódica 0,02 % (p/v).
Figura 1. Esquema del diseño del ELISA de competencia en
fase heterogénea.
e) evaluar qué calidad de microplacas resultan más apropiadas,
en relación con la sensibilidad del método y los niveles de anali-
to en muestras de individuos sanos. En esta fase del trabajo, se
compararon placas Nunca Maxisorp de alto pegado, con placas
Nunca Polisorp de pegado estándar.
f) estudiar la estabilidad de la Fxn en muestras de sangre anticoa-
gulada mantenida a 4 ºC; para ello, se realizó la determinación de
Fxn, tal cual fue optimizada en etapas anteriores, sobre muestras
de sangre entera sin procesar, conservadas entre 5 y 0 días a 4 ºC.
Esta determinación se realizó sobre muestras de donantes sa-
nos, apareando el muestreo de modo que ninguna persona deba
someterse a la extracción de sangre más de dos veces durante el
ensayo.
g) determinar la reproducibilidad del ensayo; finalmente, la curva
de Fxn fue realizada 3 veces en días distintos, por el mismo ope-
rador, con la finalidad de estudiar el coeficiente de variación sobre
la medición de Fxn. Se analizó el coeficiente de variación de los
parámetros de ajuste (asíntota superior, asíntota inferior, punto
medio –denominado EC50– y pendiente del punto medio).
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Se observa la secuencia de pasos para la detección de Fxn. Paso 1ºA,
preincubación del anticuerpo anti-rFxn con la muestra, o batería se-
riada de estándares de rFxn de concentración conocida; panel 1ºB,
recubrimiento de los pocillos de la microplaca de ELISA con rFxn, y
posterior bloqueo de sitios inespecíficos; panel 2º, incubación de la
mezcla de anticuerpos y estándares/muestra en los pocillos de la
microplaca. Panel 3º, detección de anticuerpos unidos, utilizando un
conjugado anti-conejo, marcado con HRP. Panel 4º, aspecto general
de las curvas sigmoideas de calibración obtenidas.
ByPC 2018;82(2):11-21.